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蔗糖磷酸化酶(SP)测试盒(紫外分光光度法)
蔗糖磷酸化酶(SP)测试盒(紫外分光光度法)图片
货号: SP-2-G
包装: 50管/48样
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货号:SP-2-G
产品介绍

注意:正式测定之前选择 2-3个预期差异大的样本做预测定。

测定意义

SP(EC 2.4.1.7)主要存在于微生物和植物中,裂解葡萄糖苷键,催化葡萄糖基转移到果糖、木糖、半乳糖和鼠李糖等,合成相应的葡萄糖基低聚糖。此外,SP还能催化氢醌合成熊果苷,具有极强的美白效果,在化妆品工业中具有重要应用。

测定原理

SP能够以磷酸为受体,催化蔗糖产生 1-磷酸葡萄糖,在葡萄糖磷酸变位酶催化下变位为 6-磷酸葡萄糖,在 6-磷酸葡萄糖脱氢酶作用下还原 NADP+生成 NADpH,导致 340nm光吸收值增加。测定 340nm吸光度增加速率,即可计算 SP活性。

自备实验用品及仪器

天平、低温离心机、恒温水浴锅、紫外分光光度计、1 ml石英比色皿和蒸馏水。

试剂组成和配制

提取液:液体 50ml×1瓶,4℃保存。

缓冲液:液体 40ml×1瓶,4℃保存。

试剂一:液体 25ml×1瓶,4℃保存。

试剂二:液体 2ml×1支,4℃保存。

试剂三:液体 1ml×1支,4℃保存。

试剂四:粉剂 1瓶,-20℃避光保存,临用前加 5ml双蒸水溶解。

试剂五:粉剂 1瓶,-20℃避光保存,临用前加 5ml双蒸水溶解。

试剂六:粉剂 1瓶,-20℃避光保存,临用前加 10ml双蒸水溶解。

试剂七:粉剂 1瓶,-20℃避光保存,临用前加 10ml双蒸水溶解。

粗酶液提取

1.组织:按照组织质量(g):提取液体积(ml)为 1:5~10的比例(建议称取约 0.1g组织,加入 1ml提取液)进行冰浴匀浆,然后 10000g,4℃,离心 10min,取上清待测。

2.细菌、真菌:按照细胞数量(104个):提取液体积(ml)为 500~1000:1的比例(建议 500万细胞加入 1ml提取液),冰浴超声波破碎细胞(功率 300w,超声 3秒,间隔 7秒,总时间 3min);然后 10000g,4℃,离心 10min,取上清置于冰上待测。

测定操作表


对照管测定管
缓冲液(μL)850650
试剂一(μL)500500
试剂二(μL)3030
试剂三(μL)2020
试剂四(μL)100100
试剂五(μL)100100
试剂六(μL)200200
试剂七(μL)200200
混匀,37℃水浴预热 5min

样本(μL)
200
迅速混匀,于 1ml石英比色皿,对照管调零,测定 340nm的初始值 A1,测定完立即放入37℃水浴准确反应 2min,迅速测定 340nm吸光值 A2,△A= A2- A1

SP活性计算公式

1.按照蛋白浓度计算

酶活定义:37℃,pH6.8时,每毫克蛋白质每分钟催化产生 1nmol NADpH为一个酶活单位。

SP活性(nmol/min/mg prot)=△A÷(ε×d)×V反总÷V样÷Cpr÷T=804×△A÷Cpr

2.按照样本质量计算

酶活定义:37℃,pH6.8时,每克样本每分钟催化产生 1nmol NADpH为一个酶活单位。

SP活性(nmol/min/g鲜重)= △A÷(ε×d)×V反总÷(V样÷V样总×W)÷T=804×△A÷W

3.按照细胞数量计算

酶活定义:37℃,pH6.8时,每 104个细胞每分钟催化产生 1nmol NADpH为一个酶活单位。

SP活性(nmol/min/104  cell)= △A÷(ε×d) ×V反总÷(V样÷V样总×细胞数量(万个))÷T=804×△A÷细胞数量(万个)

ε :NADpH摩尔消光系数,6220 L/mol/cm;d:比色皿光径,1cm;V反总:反应体系总体积,2ml;V样:反应体系中样本体积,0.2ml;W:样本质量,g;Cpr:蛋白浓度,mg/ml;T:反应时间,2min

注意事项

1.粉剂-20℃保存,配制好的试剂 3天内使用完。

2.可选用 BCA法测定蛋白含量试剂盒测定蛋白含量。

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